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数显型脑立体定位仪

  • 更新时间:2023-08-21
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简要描述:数显型脑立体定位仪是我司根据国内多位神经科学研究领域专家的建议,并在国外多种同类产品的基础上研发而成的,在原有标准型定位仪的三维操作臂上增加了位移传感器和LCD数字显示屏,使X、Y、Z轴坐标可在显示屏上实时显示,一键清零,用户无需前后查看数据,直接读取X、Y、Z轴移动距离,大大简化实验操作的同时提高数据精度

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产品详情

数显型脑立体定位仪是我司根据国内多位神经科学研究领域专家的建议,并在国外多种同类产品的基础上研发而成的,在原有标准型定位仪的三维操作臂上增加了位移传感器和 LCD 数字显示屏,使X、Y、Z 轴坐标可在显示屏上实时显示,一键清零,用户无需前后查看数据,直接读取 X、Y、Z轴移动距离,大大简化实验操作的同时提高数据精度。


脑立体定位仪又称脑固定装置(Stereotaxic Apparatus),它是利用动物颅骨外面的标志或其它参考点所规定的三度坐标系统,来确定皮层下某些神经结构的位置,是神经解剖、神经生理、神经药理和神经外科等领域内的重要研究设备,可用于对神经结构进行定向的注射、刺激、破坏、引导电位等操作,可用于帕金森氏病、癫痫红外脑内肿瘤等动物模型的建立,也可用于学习记忆,脑内神经干细胞移植,脑缺血等方面的研究。


功能特点:

1)开放式的底盘结构:产品采取通用的U形底座开放式结构,方便进行多角度的操作;也可自由配置单臂、双臂、单臂数显、双臂数显等用于同时刺激和记录。
2)广域精准的调节性:可垂直方向180 度旋转、水平方向360 度旋转的操作臂为研究人员提供灵活、精确的定位;
3)读数简约性:X、Y、Z 三轴移动距离于 LCD 显示屏实时显示,用户无需前后查看数据,直接读取数值,可在任意位置点一键清零,根据脑图谱直接定位,避免二次读数及计算,大大简化实验操作;
4)外接设备的多样性:夹持器部件可外接各种规格的探针、电极固定夹持器,执行单元,等,也可以根据用户的不同实验要求提供定制的固定夹持器以满足多种实验要求;
5)高精度性:进口位移传感器和显示屏质量稳定可靠,读数精度10um,远高于标准型定位仪;
抗干扰性:数字显示屏采用直流电池供电,避免了交流电带来的电子噪声干扰,适用于电生理实验;

“归零"功能

可以使用户快速的在实验动物颅骨上设定一个参考点。因此可节省了用户的宝贵时间并提高了精确度。归零功能的设置很简单,在每个轴的任何位置都可以设置为“零",这样使实验变得简单和直接。1。需找参考点“Bregma"。2.将所有的坐标值设为“零"。3.移动操纵臂到目标位置点。

存储功能

目标的坐标值可以被保存到51900和51903等数字脑立体定位仪的显示盒中。

标准配置包括的组件
51900(单臂)和51903(双臂)数字脑立体定位系统带有一个探针固定器(51631),大鼠类适配器(51621)(包含鼻夹和18°耳棒)。


SA-150型数显小鼠脑定位仪



SA-150型数显大鼠脑定位仪



SA-151型数显型双臂脑定位仪



应用领域:

脑立体定位仪是神经解剖、神经生理、神经药理和神经外科等领域内的重要研究设备,可用于对神经结构进行定向的注射、刺激、破坏、引导电位等操作,可用于帕金森氏病、癫痫红外脑内肿瘤等动物模型的建立,也可用于学习记忆,脑内神经干细胞移植,脑缺血等方面的研究。



相关配件及可选配件:



大鼠门牙固定适配器

小鼠固定适配器


 


电极夹持器

电极、螺帽、注射器夹持器


电极、注射器夹持器


微量注射器




型号规格:

型号

描述

SA-150-1

小鼠数显型,单臂

SA-150-2

大鼠数显型,单臂

SA-150-3

大小鼠数显型,单臂

SA-151-1

小鼠数显型,双臂

SA-151-2

大鼠数显型,双臂

SA-151-3

大小鼠数显型,双臂


部分参考文献:
1. Albéri, L., Lintas, A., Kretz, R., Schwaller, B., & Villa, A. E. (2013). The calcium-binding protein parvalbumin modulates the firing 1 properties of the reticular thalamic nucleus bursting neurons. Journal of neurophysiology, 109(11), 2827-2841.
2. Sonati, T., Reimann, R. R., Falsig, J., Baral, P. K., O’Connor, T., Hornemann, S., Aguzzi, A. (2013). The toxicity of antiprion antibodies is mediated by the flexible tail of the prion protein. Nature, 501(7465), 102-106.
3. Ali, I., O’Brien, P., Kumar, G., Zheng, T., Jones, N. C., Pinault, D., O’Brien, T. J. (2013). Enduring Effects of Early Life Stress on Firing Patterns of Hippocampal and Thalamocortical Neurons in Rats: Implications for Limbic Epilepsy. PLOS ONE, 8(6), e66962.
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5. Bolzoni, F., Bączyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
6. Bolzoni, F., Bączyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
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